Datos de contacto
Científico Responsable

- Teléfono: (+34) 955 923 130
- fgomezhs@us.es
Técnico Responsable

- Teléfono: (+34) 955 923 030
- microscopia-ibis@us.es
El Servicio de Microscopía está destinado a proporcionar a la comunidad científica infraestructura y apoyo técnico para facilitar el uso de diferentes técnicas de microscopía en el desarrollo de su actividad. El Servicio cuenta con los equipos necesarios para la observación de las muestras en microscopía óptica, microscopía fluorescente y microscopía confocal, para contribuir a mejorar la calidad de la investigación, con un compromiso de gestión orientado a la mejora continua y la obtención de sólidos resultados
Ubicación:1ª y 2ª Planta
Horario:L-V: De 9:00 a 17:00 *
(*) Aquellos experimentos que requieran tiempo fuera del horario establecido se podrán realizar previo conocimiento del técnico responsable.
Las técnicas que ofrece este servicio son numerosas. Entre las opciones que se ofrecen destacamos algunas:
La adaptación del software a aplicaciones específicas es posible mediante la grabación y ejecución de macros. Adicionalmente NIS-ELEMENTS AR permite mediante un potente lenguaje de programación poder crear aplicaciones nuevas o modificar las existentes en el propio software.
Sistema equipado para la visualización de imágenes en campo claro, dispone de contraste de fases, de fluorescencia y microdisección de fracciones de tejido.
Objetivos: 4x, 10x, 20x, 40x.
Filtros: DAPI, GFP, TRITC, FITC.
[2ª Planta]
Posee láseres con las líneas de excitación 405, 458, 476, 488, 496, 514, 561, 594 y 633 nm.
Filtro AOTF (permite ajustar la potencia de láseres).
Filtro AOBS (permite mayor libertad de selección de recogida de emisión).
Objetivos 2.5x, 10x, 50x, 20x Glyc, 63x Glyc, 40x Oil, 63x Oil
Detección de 4 canales de fluorescencia y 1 canal de luz transmitida
Software de adquisición y análisis de imagen (FRAP, FRET, Multicolor Package, Materials Package, Physiology, 3D Visualization).
Sistema de incubación para la temperatura y CO2.
[1ª Planta]
Microscopio confocal espectral de barrido por láser de alta velocidad y alta sensibilidad, basado en microscopio invertido con la tecnología de láser blanco, FLIM, y super-resolución Lightning.
- Intervalo de longitudes de onda de detección: 350 – 850 nm
Sistema de microscopio de campo claro y/o de fluorescencia de alta velocidad de adquisición en los 3 ejes basado en un microscopio invertido con la tecnología de aclaramiento computacional y Thunder
Sistema equipado para la adquisición de imágenes en campo claro, contraste interferencial de Nomarski, y de fluorescencia.
Objetivos 2x, 4x, 10x, 20x, 40x, 100x Oil
Filtros DAPI, FITC, TRITC.
[1ª Planta - área Neurociencias]
Equipo de estereología para mediciones cuantitativas eficientes, reproducibles y no sesgadas. CAST permite la estimación de:
Microscopio de fluorescencia directo con motorizaciones de los ejes X, Y, Z.
Objetivos 2x, 4x, 10x, 20x, 40x, 100x Oil
Filtros DAPI, FITC, TRITC.
[2ª Planta]
Equipo de estereología para mediciones cuantitativas eficientes, reproducibles y no sesgadas. CAST permite la estimación de:
Además tiene control de motorización en eje Z /(X/Y) para uso del disector óptico.
Adquisiciones de Super imágenes (barrido de todo el portaobjetos).
Almacenamiento de imágenes para archivo y su posterior modificación.
Medición de longitudes, ángulos, diámetros, radios, etc. con cambio de unidades.
Microscopio de fluorescencia directo con motorizaciones de los ejes X, Y, Z.
Objetivos 2x, 4x, 10x, 40x, 60x Oil, 100x Oil
Filtros DAPI, FITC, TRITC.
Fuente de iluminación tipo LED Precis Excite, con lámpara precentrada de larga duración.
[1ª planta]
Sistema equipado para la adquisición de imágenes en campo claro, contraste de fases y de fluorescencia.
Objetivos 4x, 10x, 20x, 40x, 60x.
Filtros DAPI, FITC, TRITC.
[1ª Planta - área Neurociencias]
Basado en la tecnología DMD (Digital Mirror Device), el equipo Andor Mosaic 3 permite la iluminación activa de múltiples áreas de interés simultáneamente. Ello permite al equipo ser utilizado para técnicas de iluminación dinámica de la muestra. El módulo DMD se encuentra compuesto por un array de 800 x 600 micro espejos. El software NIS-Elements, al definir uno o varios ROI de cualquier tamaño o forma en la imagen, permite variar el ángulo de inclinación de los micro-espejos correspondientes a esas áreas con lo que se consigue iluminar únicamente esas áreas de la imagen.
Sistema equipado para la adquisición de imágenes en campo claro, contraste interferencial de Nomarski, y de fluorescencia.
Objetivos 4x, 10x, 20x, 40x, 60x Oil, 100x Oil.
Filtros DAPI, FITC, TRITC, WGr (de banda ancha de emisión, sólo en el de la 1 planta).
Fuente de iluminación tipo LED Precis Excite, con lámpara precentrada de larga duración.
Software de adquisición y análisis de imagen CellSens Dimension.
Análisis de imagen intuitivo para aplicaciones biomédicas en microscopia integrando control de cámaras y microscopio motorizado y adquisición de imagines con autofocus, mediciones interactivas, edición, visualizar simultáneamente múltiples imagines y la imagen en vivo del microscopio, función zoom de imagen.
Posibilidad de adquisición en Z y experimentos de time-lapse.
[1ª Planta] [2ª Planta]
Sistema equipado para la adquisición de imágenes en campo claro, contraste interferencial de Nomarski, y de fluorescencia.
Objetivos 10x, 20x, 40x, 60x, 100x Oil.
Filtros DAPI, FITC, TRITC.
Fuente de iluminación tipo LED Precis Excite, con lámpara precentrada de larga duración.
Software de adquisición y análisis de imagen CellSens Dimension.
Análisis de imagen intuitivo para aplicaciones biomédicas en microscopia integrando control de cámaras, mediciones interactivas, edición, visualización simultánea de múltiples imágenes y la imagen en vivo, función zoom de imagen.
Posibilidad de realización de experimentos de time-lapse.
[1ª planta] [2ª planta]
El contenido de estas Normas afecta a todos los usuarios de los equipos de microscopía del IBIS.
Los usuarios que no cumplan las normas generales se les amonestara con imposibilidad de uso de un tiempo. Si incumplimiento persiste se comunicará al IR del grupo.
Las lámparas de mercurio convencionales pueden apagarse no antes de 15 min después de su encendido. Una lámpara de mercurio recién apagada no debe de encenderse antes de 30 min de su enfriamiento.
En una sesión con el Técnico Responsable se comprobará el conocimiento del manejo del microscopio, la comprensión del concepto de confocalidad, de distintos parámetros de adquisición, de la capacidad de manejo de hardware, trabajo de forma individual y cuidadosa con el equipamiento.
A continuación puede descargar las tarifas aplicables.
Para solicitar información al respecto puede dirigirse a la siguiente dirección de correo electrónico: microscopia-ibis@us.es.